DOI:10.1002/jbma.37137

使用多层静电纺丝法制备了具有不同聚合物浓度的聚（乳酸-乙醇酸）/聚乙烯吡咯烷酮+聚环氧乙烷[PLGA/（PVP+PEO）]支架，并对其理化性能和生物相容性进行了测试，以筛选出性能优良的组织工程支架。以PLGA溶液（15％w/v）为底部溶液，以12％w/vPVP+PEO混合溶液为表层溶液。每10ml表层混合溶液中PVP与PEO的质量比为1.08g:0.12g，0.96g:0.24g和0.84g:0.36g。与用于制备纯PVP+PEO（0.96g:0.24g，A组）支架和纯PLGA（E组）支架的常规静电纺丝法相比，采用底层溶液和表层溶液交替喷射的多层静电纺丝技术制备了包括PLGA/（PVP+PEO）（1.08g:0.12g，B组），PLGA/（PVP+PEO）（0.96g:0.24g，C组）和PLGA/（PVP+PEO）（0.84g:0.36g，D组）在内的多层纳米纤维支架。通过细胞计数试剂盒-8（CCK8）分析、4′，6-二氨基-2-苯基吲哚（DAPI）染色和扫描电镜（SEM）等方法对5种支架的形态和特征进行了分析，并对细胞支架复合材料的生物相容性进行了评估。因此，在PVP与PEO的质量比为0.96g:0.24g时，通过多层静电纺丝技术可制备出最佳的多层纳米纤维支架。体外实验证实了该支架具有出色的生物相容性和力学性能，在组织工程领域具有广阔的应用前景。

图1a.三明治结构的示意图。

图1b.纤维支架的一般形态及其在光学显微镜（40x）下的外观：b：B组；c：C组；d：D组；e：E组。

图2.纤维支架的表面结构（3000倍）和横截面结构（200倍）SEM图像以及纤维直径分布；a和g：A组；b和h：B组；c和i：C组；d和j：D组；e和k：E组；f：横截面结构。

图3.纤维支架的力学表征：a：最大力；b：弹性模量；c：拉伸强度（*p＜0.05；**p＜0.01）。

图4.纤维支架的静态接触角：b：B组；c：C组；d：D组；e：E组；f：各组支架接触角的统计图（*p＜0.05；**p＜0.01）。

图5.纤维支架的表面粗糙度：a：Ra；b：Rz；c：Ry；（*p＜0.05；**p＜0.01）。

图6.支架的FTIR。

图7.支架的XRD。

图8.支架在溶菌酶中的体外降解速率（14天）。

图9.与五组支架共培养1、3、5和7天时hBMSC的增殖情况。

图10a.在激光共聚焦显微镜下培养7天后细胞支架复合材料的DAPI荧光染色：b：B组；c：C组；d：D组；e：E组。

图10b.在激光共聚焦显微镜下检测到的第7天细胞支架培养物中的吖啶橙荧光染色。b：B组；c：C组；d：D组；e：E组。

图11.培养7天后在SEM下的细胞支架复合物：b：B组；c：C组；d：D组；e：E组。